Половые особенности регуляции жировой ткани

О. М. Сулаєва; Н. І. Белемець

doi:10.24026/1818-1384.4(60).2017.118729

Автор(и)

О. М. Сулаєва Український науково-практичний центр ендокринної хірургії, трансплантації ендокринних органів і тканин МОЗ України, Київ, Україна https://orcid.org/0000-0002-9614-4652
Н. І. Белемець Український науково-практичний центр ендокринної хірургії, трансплантації ендокринних органів і тканин МОЗ України, Київ, Україна

DOI:

https://doi.org/10.24026/1818-1384.4(60).2017.118729

Ключові слова:

жирова тканина, статеві особливості, естрогени, вісцеральний і підшкірний жир, білі й бурі адипоцити

Анотація

В огляді проведено аналіз статевих особливостей регуляції жирової тканини. Обговорюються питання гетерогенності структурно-функціональної організації та регуляції жирової тканини у вісцеральному і підшкірному депо. Показано, що естрогени чинять плейотропну захисну дію за рахунок прямого ефекту на адипоцити та опосередкованого впливу через гіпоталамус на симпатичну іннервацію жирової тканини, модулюючи ліполіз, проліферацію преадипоцитів і процес гіперплазії, а також трансформацію білих адипоцитів у бурі. Високий обсяг підшкірної жирової клітковини у жінок визначається впливом естрогенів і є головним фактором, що визначає специфічну для жінок резистентність до метаболічних захворювань. В цілому збільшення маси підшкірної жирової тканини більш сприятливе щодо метаболічного профілю. Навпаки, абдомінальне відкладення жиру асоційоване з інсулінорезистентністю і розвитком асоційованої патології.

Біографії авторів

О. М. Сулаєва, Український науково-практичний центр ендокринної хірургії, трансплантації ендокринних органів і тканин МОЗ України, Київ

Сулаева Оксана Николаевна, д. мед. наук, профессор, заведующая отделом патологии, г. Киев

Н. І. Белемець, Український науково-практичний центр ендокринної хірургії, трансплантації ендокринних органів і тканин МОЗ України, Київ

Белемец Наталья Ивановна - биолог, зав. отделения цитологии

Посилання

Esteve R. Adipose tissue: cell heterogeneity and functional diversity. Endocrinol Nutr. 2014;61(2):100-12. doi: 10.1016/j.endonu.2013.03.011.

Vegiopoulos A, Rohm M, Herzig S. Adipose tissue: between the extremes EMBO J. 2017;36(14):1999-2017.

Booth A, Magnuson A, Foster M. Detrimental and protective fat: body fat distribution and its relation to metabolic disease. Horm Mol Biol Clin Investig. 2014;17(1):13-27.

Tchoukalova YD, Koutsari C, Votruba SB. Sex- and depot-dependent differences in adipogenesis in normal-weight humans. Obesity. 2010;18(10):1875-80. doi: 10.1038/oby.2010.56.

Gómez-Serrano M, Camafeita E, García-Santos E, et al. Proteome-wide alterations on adipose tissue from obese patients as age-, diabetes- and gender-specific hallmarks. Sci Rep. 2016;6:25756. doi: 10.1038/srep25756.

Palmer AK, Kirkland JL. Aging and adipose tissue: potential interventions for diabetes and regenerative medicine. Exp Gerontol. 2016;86:97-105. doi: 10.1016/j.exger.2016.02.013.

Tzanetakou IP, Katsilambros NL, Benetos A. "Is obesity linked to aging?": adipose tissue and the role of telomeres. Ageing Res Rev. 2012;11(2):220-9. doi: 10.1016/j.arr.2011.12.003.

Pararasa C, Bailey CJ. Ageing, adipose tissue, fatty acids and inflammation. Biogerontology. 2015;16(2):235-48. doi: 10.1007/s10522-014-9536-x

Chen Y, Pan R, Pfeifer A. Fat tissues, the brite and the dark sides. Pflugers Arch. 2016;468:1803-7. doi:10.1007/s00424-016-1884-8

Papaetis GS, Papakyriakou P, Panagiotou TN. Central obesity, type 2 diabetes and insulin: exploring a pathway full of thorns. Arch Med Sci. 2015;11(3):463-82. doi: 10.5114/aoms.2015.52350.

Valencak TG, Osterrieder A, Schulz TJ. Sex matters: The effects of biological sex on adipose tissue biology and energy metabolism. Redox Biol. 2017;12:806-813. doi: 10.1016/j.redox.2017.04.012.

White UA, Tchoukalova YD. Sex dimorphism and depot differences in adipose tissue function. Biochim Biophys Acta. 2014;1842(3):377-392. doi: 10.1016/j.bbadis.2013.05.006.

Palmer BF, Clegg DJ. The sexual dimorphism of obesity. Mol Cell Endocrinol. 2015;402:113-9. doi: 10.1016/j.mce.2014.11.029.

White UA, Fitch MD, Beyl RA, Hellerstein MK, Ravussin E. Association of in vivo adipose tissue cellular kinetics with markers of metabolic health in humans. J Clin Endocrinol Metab. 2017. doi: 10.1210/jc.2016-4000.

Lee MJ, Wu Y, Fried SK. Adipose tissue heterogeneity: implication of depot differences in adipose tissue for obesity complications. Mol Aspects Med. 2013;34(1):1-11. doi: 10.1016/j.mam.2012.10.001.

Simpson ER, Ackerman GE, Smith ME, Mendelson CR. Estrogen formation in stromal cells of adipose tissue of women: induction by glucocorticosteroids. Proc Natl Acad Sci U S A. 1981;78:5690-4.

Ackerman GE, Smith ME, Mendelson CR, MacDonald PC, Simpson ER. Aromatization of androstenedione by human adipose tissue stromal cells in monolayer culture. J Clin Endocrinol Metab. 1981;53:412-7.

Misso ML, Jang C, Adams J, Tran J, Murata Y, Bell R, et al. Adipose aromatase gene expression is greater in older women and is unaffected by postmenopausal estrogen therapy. Menopause. 2005;12:210-5.

Simpson ER. Aromatase: biologic relevance of tissue-specific expression. Semin Reprod Med. 2004;22:11-23.

Cox-York KA, Erickson CB. Region-specific effects of oestradiol on adipose-derived stem cell differentiation in post-menopausal women. J Cell Mol Med. 2017;21(4):677-684. doi: 10.1111/jcmm.13011.

Zhang W, Schmull S, Du M. Estrogen Receptor α and β in Mouse: Adipose-Derived Stem Cell Proliferation, Migration, and Brown Adipogenesis In Vitro. Cell Physiol Biochem. 2016;38(6):2285-99. doi: 10.1159/000445583.

Foryst-Ludwig A, Kintscher U. Metabolic impact of estrogen signalling through ERα and ERβ. J Steroid Biochem Mol Biol. 2010;122:74-81.

Hepler C, Vishvanath L, Gupta RK. Sorting out adipocyte precursors and their role in physiology and disease. Genes Dev. 2017;31(2):127-140.

Jeffery E, Wing A, Holtrup B, Sebo Z, Kaplan JL. The Adipose Tissue Microenvironment Regulates Depot-Specific Adipogenesis in Obesity. Cell Metab. 2016;24(1):142-50. doi: 10.1016/j.cmet.2016.05.012.

Kim SN, Jung YS, Kwon HJ, Seong JK, Granneman JG, Lee YH. Sex differences in sympathetic innervation and browning of white adipose tissue of mice. Biol Sex Differ. 2016;7:67. doi: 10.1186/s13293-016-0121-7.

Lee YH, Mottillo EP, Granneman JG. Adipose tissue plasticity from WAT to BAT and in between. Biochim Biophys Acta. 2014;1842(3):358-69. doi: 10.1016/j.bbadis.2013.05.011.

Fenzl A, Kiefer FW. Brown adipose tissue and thermogenesis. Horm Mol Biol Clin Investig. 2014;19(1):25-37. doi: 10.1515/hmbci-2014-0022.

Bays HE, González-Campoy JM, Bray GA. Pathogenic potential of adipose tissue and metabolic consequences of adipocyte hypertrophy and increased visceral adiposity. Expert Rev Cardiovasc Ther. 2008;6(3):343-68. doi: 10.1586/14779072.6.3.343.

Smith SR, Lovejoy JC, Greenway F. Contributions of total body fat, abdominal subcutaneous adipose tissue compartments, and visceral adipose tissue to the metabolic complications of obesity. Metabolism. 2001;50(4):425-35.

Driskell RR, Jahoda CA, Chuong CM, Watt FM, Horsley V. Defining dermal adipose tissue. Exp Dermatol. 2014;23(9):629-31. doi: 10.1111/exd.12450.

Schlecht I, Fischer B, Behrens G, Leitzmann MF. Relations of Visceral and Abdominal Subcutaneous Adipose Tissue, Body Mass Index, and Waist Circumference to Serum Concentrations of Parameters of Chronic Inflammation. Obes Facts. 2016;9(3):144-57. doi: 10.1159/000443691.

Contreras GA, Thelen K, Ayala-Lopez N, Watts SW. The distribution and adipogenic potential of perivascular adipose tissue adipocyte progenitors is dependent on sexual dimorphism and vessel location. Physiol Rep. 2016 Oct;4(19). pii: e12993.

White UA, Fitch MD, Beyl RA, Hellerstein MK, Ravussin E. Differences in In Vivo Cellular Kinetics in Abdominal and Femoral Subcutaneous Adipose Tissue in Women. Diabetes. 2016;65(6):1642-7. doi: 10.2337/db15-1617.

Acosta JR, Douagi I, Andersson DP. Increased fat cell size: a major phenotype of subcutaneous white adipose tissue in non-obese individuals with type 2 diabetes. Diabetologia. 2016;59(3):560-70. doi: 10.1007/s00125-015-3810-6.

Trayhurn P. Hypoxia and adipose tissue function and dysfunction in obesity. Physiol Rev. 2013;93(1):1-21. doi: 10.1152/physrev.00017.2012.

Rasouli N. Adipose tissue hypoxia and insulin resistance. J Investig Med. 2016;64(4):830-2. doi: 10.1136/jim-2016-000106

Zhang M, Hu T, Zhang S, Zhou L. Associations of Different Adipose Tissue Depots with Insulin Resistance: A Systematic Review and Meta-analysis of Observational Studies. Sci Rep. 2015;5:18495. doi: 10.1038/srep18495.

Lawler HM. Adipose Tissue Hypoxia, Inflammation, and Fibrosis in Obese. J Clin Endocrinol Metab. 2016;101(4):1422-8. doi: 10.1210/jc.2015-4125.

Flehmig G, Scholz M, Klöting N, Identification of adipokine clusters related to parameters of fat mass, insulin sensitivity and inflammation. PloS One. 2014;9(6):e99785. doi: 10.1371/journal.Pone.0099785.

Martinez-Santibañez G, Lumeng CN. Macrophages and the regulation of adipose tissue remodeling. Annu Rev Nutr. 2014;34:57-76. doi: 10.1146/annurev-nutr-071812-161113.

Bai Y, Sun Q. Macrophage recruitment in obese adipose tissue. Obes Rev. 2015;16(2):127-36. doi: 10.1111/obr.12242.

Gabriely I, Ma XH, Yang XM. Removal of visceral fat prevents insulin resistance and glucose intolerance of aging: an adipokine-mediated process? Diabetes. 2002;51(10):2951-8.

Hernandez TL, Kittelson JM, Law CK, Ketch LL. Fat redistribution following suction lipectomy: defense of body fat and patterns of restoration. Obesity (Silver Spring). 2011;19(7):1388-95. doi: 10.1038/oby.2011.64.